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兩種相似度極高的血液基因檢測標志物,各有什么區(qū)別及應用?

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作者:閔

這段時間我們介紹了DNA甲基化的種種應用,學習了這項檢測在早期篩查、術后復發(fā)監(jiān)控以及療效評估等方面的現(xiàn)狀與進展(點擊閱讀)。

有些愛研究的病友可能會發(fā)現(xiàn)血液、基因檢測、復發(fā)監(jiān)控這些關鍵詞似乎與當下另一項極熱門的檢測項目——MRD很相似。那么這兩項檢測之間到底有何異同,咱們就通過今天這篇文章做個對比。

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DNA甲基化與MRD檢測的檢測樣本對比

DNA甲基化的常用樣本在前文中已經詳細介紹過(點擊閱讀),出于最初早期篩查的需要而選擇血液樣本。隨著更多甲基化標志物被發(fā)現(xiàn),這項檢測也被用于除腸癌以外的其他癌種,如膀胱癌、乳腺癌等等。根據相應癌種的特點,甲基化檢測偶爾也會使用諸如糞便、尿液等樣本。盡管如此,血液仍是DNA甲基化最常使用的樣本類型。

MRD微殘留檢測作為當下腫瘤領域最熱門的檢測項目,已經廣為人知了。病友們應該都很清楚它采用血液作為主要樣本,取樣方便為后續(xù)跟蹤提供便利,但血液并非MRD檢測唯一樣本

根據檢測策略不同,MRD有種技術路線需配合術后腫瘤組織樣本的檢測結果與后續(xù)血液跟蹤結果對照,因此在這類MRD檢測策略中除血液外還會用組織樣本



我們可以看到,雖然兩項檢測都不止一種樣本選擇,但無疑血液樣本才是它們最為主要的樣本選擇。血液在我們全身循環(huán),內部時常會有各器官組織自然脫落或者老化凋亡釋放而來的DNA,也被稱為游離DNA(cfDNA);腫瘤細胞也會像這樣釋放自身DNA到外周血當中,此被稱為循環(huán)腫瘤DNA(ctDNA),這是實現(xiàn)用血液檢測這個項目的理論基礎。

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DNA甲基化與MRD檢測的檢測技術對比

DNA甲基化可用PCR、NGS以及質譜檢測,目前大多數(shù)甲基化指標均采用PCR技術。PCR技術簡便快捷并且特異性高的特點與甲基化檢測非常適配,且現(xiàn)在各癌種的甲基化檢測指標通常為少量基因的組合,因此對檢測通量沒有硬性要求。原則上,NGS也可用于甲基化的檢測,但需要額外改變檢測及數(shù)據分析方式,無形中增加了操作步驟以及測序成本,暫時不適合廣泛應用。

MRD微殘留檢測采用NGS技術,利用其高通量的特性,盡可能多的覆蓋各級別腫瘤相關基因并涵蓋點突變、融合、擴增等突變類型。盡管PCR也可滿足上述突變類型的檢測,但受檢測通量限制,因此不用于MRD檢測。



二者本質仍屬于基因檢測,只是檢測內容不同,理論上均可采用PCR與NGS技術檢測,但各自項目特點發(fā)展為現(xiàn)在的狀態(tài)。

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DNA甲基化與MRD檢測的應用場景比較

DNA甲基化最初用于腸癌的早期篩查,后來逐步應用于術后的復發(fā)監(jiān)控以及用藥療效預測。隨著新的甲基化標志物被發(fā)現(xiàn),DNA甲基化檢測也不再局限于腸癌,逐步被應用于肺癌、乳腺癌、膀胱癌等等。

只是這些癌種的甲基化標志物仍僅限于早期篩查,還未拓展后續(xù)應用,需要等待更深入的研究數(shù)據。



圖片來源:包圖網

MRD微殘留檢測當下最主要的應用是術后復發(fā)監(jiān)控,有大量的臨床試驗探索MRD與復發(fā)風險的關系。除此以外,還有部分研究在探索MRD對治療中的晚期患者治療決策的參考價值(如Drug-holiday研究),有些類似用藥療效預測。

如同前者一般,MRD也不再局限于肺癌,其他諸如乳腺癌、胃癌、腸癌等等也在嘗試。全球第一張關于MRD的注冊證是美國FDA批準用于根治性手術后浸潤性膀胱癌(MIBC)患者使用阿替利珠單抗進行輔助治療的伴隨診斷,甚至都不是肺癌應用。



兩項檢測的應用寬度相似,都已不再局限于單一癌種,覆蓋的癌種越來越多;二者的應用深度也類似,除了MRD尚無早期篩查的研究,二者在其余如術后復發(fā)監(jiān)控以及療效預測等方面都有相關研究報道。

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以復發(fā)監(jiān)控應用來具體對比二者的差異

上述不同角度的對比可能還是讓各位對DNA甲基化檢測與MRD檢測的實際操作缺乏具象化的認識,筆者再以二者皆具備的復發(fā)監(jiān)控應用來進一步介紹這兩項檢測到底是如何落地實現(xiàn)的。

以2021年我國溫州醫(yī)科大學及溫州醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院發(fā)表的DNA甲基化研究為例,研究中對82名腸癌患者取術前血做了一次甲基化檢測,有73名患者為甲基化陽性,并在術后兩周內對這73名患者再次抽血做第二次甲基化檢測[1]。

結果發(fā)現(xiàn)術后有21名患者為甲基化陽性,術后甲基化水平較術前多有下降且未復發(fā)患者普遍有更加顯著的下降趨勢。另外20名復發(fā)患者中有11名的術后甲基化檢測為陽性,經統(tǒng)計學分析術后甲基化陽性與更差的復發(fā)概率相關(HR=4.2,P=0.0005)。



再以今年由廣東省人民醫(yī)院發(fā)表的MRD長期隨訪研究為例,研究在261名I-III期接受手術的非小細胞肺癌患者接受手術后1個月左右(需輔助治療的患者在其輔助治療開始前)先抽血做了第一次MRD檢測(即NGS平臺基因檢測)并為基線,此后每3-6個月定期抽血做MRD檢測[2]。結論也耳熟能詳,縱向MRD陰性(隨訪期間一直保持MRD陰性)的人群復發(fā)風險較低,而MRD陽性(除縱向陰性以外的人群)的人群則復發(fā)風險較高。



我們概括一下,無論采用DNA甲基化還是MRD檢測作為術后復發(fā)監(jiān)控的預測指標,它們的實際操作都是在術后不同的時間點抽血做基因檢測(二者都需要定期復查CT核磁),只是MRD檢測的策略設計更加完善,增加了多個時間點的隨訪,并且數(shù)據分析的角度也更加多樣,如對比影像學復發(fā)的先后順序,探究MRD陰性復發(fā)的人群特征等等。

二者不僅實操相似,連缺陷也如出一轍,例如即便檢測為陽性也不能立即判定復發(fā),仍需結合CT核磁等影像學檢查確認,又例如是否必須立刻給與某次檢測陽性的患者相應治療,后續(xù)管理策略缺失等等。

由于DNA甲基化的術后復發(fā)監(jiān)控沒有設置更多時間點,我們統(tǒng)一采用術后第一次檢測(即MRD的基線時間點)的結果來分析對比。

二者的相同點在于基線陽性的患者具有更高的復發(fā)風險。進一步計算DNA甲基化的PPV(陽性預測價值,陽性且復發(fā)的人數(shù)/陽性總人數(shù))與NPV(陰性預測價值,陰性未復發(fā)的人數(shù)/陰性總人數(shù))分別為52.4%與82.7%,而基線時間點MRD檢測結果的PPV與NPV分別為91.3%和76.5%。

從數(shù)據而言,DNA甲基化陰性似乎相比MRD陰性更安全一些,而甲基化陽性人群似乎與復發(fā)的相關性不如MRD陽性緊密。顯然這樣直接比較非常的粗糙,首先兩個研究納入患者的癌種不同;其次甲基化研究的樣本量偏少,并且二者基線抽血時間點也不同,甲基化在術后2周就完成抽血,MRD則是術后一個月內。

不過這也給我們一些思考,至少MRD不是唯一可以用于術后復發(fā)監(jiān)控的指標(當然腫瘤標志物也可監(jiān)控,文章僅從基因檢測角度出發(fā))。

再者,假如專家們能發(fā)現(xiàn)更多與肺癌相關性高的甲基化突變位點,假如甲基化隨訪不再只做單獨的一個時間點而是模仿MRD設置更多的隨訪時間點,是否它的預測性能可以更上一個臺階。

更進一步從檢測周期和檢測成本出發(fā),PCR技術都低于NGS,DNA甲基化是否有機會將目前高昂的MRD檢測費用給打下來?



圖片來源:包圖網

5

總結

早在十幾年前就有專家嘗試先用測序技術(這里指一代測序)分析腫瘤組織中如KRAS等基因的狀態(tài),隨后再用特殊的PCR技術檢測患者術后血漿中相應突變情況達到復發(fā)隨訪的目標[3]。這條技術路線被認為費時費力,直到近些年,NGS技術憑借其高通量的優(yōu)勢脫穎而出才優(yōu)化變成了MRD檢測,只是價格仍然十分高昂。

另一部分專家則認為如果想實現(xiàn)復發(fā)監(jiān)控的目標,采用腫瘤特異性的甲基化檢測更為便捷,而且DNA甲基化相較于常規(guī)的基因突變更加穩(wěn)定不易變化。可惜的是,DNA甲基化標志物過于分散,不同癌種間標志物的研究結果難以接續(xù),進展速度緩慢逐漸被埋沒。

DNA甲基化與MRD檢測同為血液標志物,它們的應用范圍有所交叉又各有特點。我們期許它們能夠有更新更好的發(fā)展,為我們帶來更物美價廉的標志物。

參考文獻

[1].Jin S, Zhu D, Shao F, et al. Efficient detection and post-surgical monitoring of colon cancer with a multi-marker DNA methylation liquid biopsy[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2021, 118(5): e2017421118.

[2].Zhang J T, Liu S Y, Gao X, et al. Follow-up Analysis Enhances Understanding of Molecular Residual Disease in Localized Non–Small Cell Lung Cancer[J]. Clinical Cancer Research, 2025, 31(7): 1305-1314.

[3].Warton K, Mahon K L, Samimi G. Methylated circulating tumor DNA in blood: power in cancer prognosis and response[J]. Endocrine-related cancer, 2016, 23(3): R157-R171.

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