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作者:寵物醫師網編委會
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前言
靜脈(IV)導管(也稱"留置針")是臨床中連接患寵血管系統的重要通道,用于輸注液體、血液制品或藥物,也可以方便多次采血,減少患寵的痛苦。
對于靜脈條件不佳或需要反復采血的患寵,靜脈導管也能幫上大忙。
但是,導管直接進入血管,一旦操作或護理不當,就可能引發感染等嚴重并發癥。
今天我們從選靜脈、選導管尺寸、無菌準備、助手配合到固定與護理,一步步拆解靜脈導管置入的關鍵要點。
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核心原則:無菌操作
由于導管是直接引入靜脈系統,每次放置都必須嚴格遵循無菌操作技術,即使只是短期留置。
置管前 或者協助置管前, 一定要洗手 , 操作中始終使用無菌技術 。
外周靜脈導管置入操作步驟
1. 選擇合適的靜脈
犬貓最常用的外周留置部位:
前肢:頭靜脈(最常用)
后肢:外側隱靜脈(常用)
其他可選:副頭靜脈、內側隱靜脈等
選擇靜脈時還要考慮患寵的狀態和住院原因:
如果患寵即將進行右前肢手術→ 不要選右前肢置管
如果患寵嘔吐→ 隱靜脈更容易保持清潔干燥
如果患寵腹瀉→ 頭靜脈更合適
多想一想,能讓自己后面幾天的工作輕松不少~
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2. 導管尺寸
不是越大越好,有些人習慣“能大則大”,也有人不管患寵大小都用 22G。
實際上,您需要的是在能順利置入的前提下,選擇滿足治療需求的最大尺寸。不大不小,剛好合適。如果導管太粗,可能會堵塞靜脈甚至造成創傷。
多數犬:20G
大型犬:18G
貓:22G 通常足夠
長度:長導管更穩定,但不宜過長。例如在臘腸犬的“小短腿”上,如果使用過長的導管輸液泵會頻繁報警。
如果您需要高速率輸注液體,應選用更大內徑的導管,您的輸液泵也會更安靜!
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3. 皮膚與人員準備
導管是直接通向血液的“門戶”,皮膚準備絕不能馬虎。
剃毛范圍要足夠大:包括整個導管、所有連接部位以及穿刺點,都要無毛。
所有靜脈導管的置入都應使用與我們外科手術相同的皮膚準備技術。接觸時間與外科皮膚準備同樣重要。用氯己定/酒精快速擦拭一下是遠遠不夠的。
有研究顯示,導管相關感染在獸醫重癥監護患寵中的發生率約為25%[3],在普通臨床環境住院患寵中約為15%[4]。
為您的安全考慮,您還應佩戴檢查手套,因為您會接觸血液,至少要戴到導管置入并用肝素帽封住導管座為止。如果沒有過多血液,您可以脫掉手套來粘貼膠帶。
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靜脈導管應始終位于剃毛區域內,以幫助預防污染。白線標示剃毛區域,藍色箭頭指向靜脈導管的末端。
4. 助手與操作者一樣重要
如果您被要求協助置管,作為助手幫忙固定患寵,你的角色非常關鍵:
讓患寵保持胸臥姿勢,伸出將要置管的肢體,通過從內向外側滾動拇指,使靜脈隆起(必要時可使用止血帶)
置管成功后,您需要“按住導管”:用拇指放在導管的末端(不是穿刺點!),防止血液到處流,同時讓操作者可以連接輸液裝置并進行固定。
5. 置管操作要點
助手讓靜脈隆起
將導管刺入靜脈,直到在針芯中看到血液回流
將導管與針芯一起再稍微推進一點(這一步很關鍵)
固定針芯不動,向前推送導管
助手立刻“按住”導管末端
連接 IV 注射端口或輸液裝置
常見錯誤提醒:
不要一見回血就立即推管,此時導管尖端可能還在靜脈外
不能用指甲抵住導管座末端將其“彈”進去,這會污染導管,應小心捏住導管座兩側推進導管
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在導管末端進行按壓,可防止穿刺點受到污染。在穿刺點處按壓會污染已無菌準備的區域,并可能導致導管部位感染。
6. 固定與沖洗
有各種各樣不同的膠帶固定方法。無論您選擇哪種方法,都必須做到兩件事:
牢固:不能移動、扭轉或脫落
可移除:不至于難撕到讓動物痛苦
推薦做法:
使用寬度合適的彈性膠帶
第一條膠帶從導管座下方穿過,繞肢體一圈并壓住導管。
第二條膠帶可做成 V 形放在導管下方,增加側向穩定
在完全固定前,先沖洗導管檢查通暢性,確認無誤后再完成全部固定,再用一條膠帶固定導管座和注射端口或輸液裝置。
透明薄膜敷料:雖然常規置管不常用,但有充分證據表明,使用透明薄膜敷料可顯著降低并發癥發生率。如果你愿意,可以在固定階段使用。
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7. 保護穿刺部位
對于短期留置(例如 1 天左右)的導管:用骨科墊棉從爪部到導管上方纏繞整個肢體。
外層用自粘繃帶包裹,露出注射端口,方便隨時使用,使用特定作為“有導管”的統一標識色,可以提醒所有同事:這只有導管,避免意外拔除。
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導管可以留置多久?
原則上,只要功能正常、沒有并發癥,就可以繼續使用。很多診所習慣每 3 天更換一次,但這也可能導致因不必要的額外置管而在靜脈中造成更多瘢痕、給患寵帶來額外不適,也不必要地頻繁更換導管,這會增加靜脈瘢痕、患寵痛苦和費用。
一項人類醫學研究表明,作為降低靜脈炎和菌血癥等風險的措施,每72至96小時更換導管并沒有額外益處[6]。
導管功能異常應拔除導管:
輸液時出現疼痛或阻力
出現不明原因發熱
出現蜂窩織炎、血栓性靜脈炎
懷疑導管相關的菌血癥或敗血癥
掃碼查看,放置靜脈導管時的情況
參考文獻
1.Catheters: a review of the selection, utilisation and complications of catheters for peripheral venous access. Tan RHH, Dart AJ, Dowling BA. Australian Veterinary Journal Volume 81, Issue 3, pages 136–139, March 2003
2.The efficacy of chlorhexidine gluconate in canine skin preparation – practice survey and clinical trials. Evans LKM, Knowles TG, Werrett G, Holt PE. Journal of Small Animal Practice. Volume 50, Issue 9, pages 458–465, September 2009
3.Surveillance of infections associated with intravenous catheters in dogs and cats in an intensive care unit. Marsh-Ng, M. L., Burney, D. P. & Garcia, J. Journal of the American Animal Hospital Association 2007: Vol 43, pgs. 13–20
4.Bacterial and fungal colonisation of peripheral intravenous catheters in dogs and cats. Seguela J, Pages J-P. Journal of Small Animal Practice. Volume 52, Issue 10, pages 531–535, October 2011
5.Effectiveness of transparent film dressing for peripheral intravenous catheter. Atay S, Yilmaz Kurt F. Journal of Vascular Access 2021. Volume 22, Issue 1, pages 135-140
6.Clinically-indicated replacement versus routine replacement of peripheral venous catheters. Webster J, Osborne S, Rickard C, Hall J. Cochrane Database of Systematic Reviews 2010, Issue 3. Art. No.: CD007798.
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